建立HPLC同时测定杭菊叶中5种绿原酸类成分及木犀草苷的方法

建立HPLC同时测定杭菊叶中5种绿原酸类成分及木犀草苷的方法 本文关键词：测定，成分，建立，方法，木犀

建立HPLC同时测定杭菊叶中5种绿原酸类成分及木犀草苷的方法 本文简介：摘要：目的：建立HPLC同时测定杭菊叶中5种绿原酸类成分及木犀草苷的方法，并分析不同生长过程杭菊叶中绿原酸类和黄酮类成分的动态变化，比较同期采收的杭菊叶与杭菊花中成分的差异，为杭菊叶的质量控制、合理利用提供参考。方法：采摘不同生长时期的杭菊叶样品及盛花期的杭菊花样品，采用HPLC方法对杭菊叶及杭菊花

建立HPLC同时测定杭菊叶中5种绿原酸类成分及木犀草苷的方法 本文内容：

　　摘要：目的：建立HPLC同时测定杭菊叶中5种绿原酸类成分及木犀草苷的方法，并分析不同生长过程杭菊叶中绿原酸类和黄酮类成分的动态变化，比较同期采收的杭菊叶与杭菊花中成分的差异，为杭菊叶的质量控制、合理利用提供参考。方法：采摘不同生长时期的杭菊叶样品及盛花期的杭菊花样品，采用HPLC方法对杭菊叶及杭菊花中绿原酸类及黄酮类成分进行检测。结果：不同生长时期杭菊叶中绿原酸类及木犀草苷成分呈不同的规律。新绿原酸、隐绿原酸、异绿原酸B随着生长时间而逐渐累积，到9月含量达到峰值后逐步下降；绿原酸、异绿原酸A则随着成分累积，在9月达到峰值，下降后又在11月出现次峰值。木犀草苷则随着生长过程逐步增加，到11月达到含量峰值。同期采收的杭菊叶中绿原酸类及黄酮类成分高于杭菊花。结论：该研究结果为确定杭菊叶的采收时间及质量测定标准提供了参考和依据，为揭示杭菊叶生长过程中资源性化学成分的变化以及药材品质的控制奠定了一定基础。

　　关键词：杭菊叶； 绿原酸； 黄酮； 生长过程； 动态变化；

　　杭白菊又称杭菊，是菊科植物Chrysanthemum morifoliumRamat.的干燥头状花序，具有散风清热，平肝明目、清热解毒功效[1],是着名的浙江道地药材“浙八味”之一。杭菊在采收的同时，会产生大量的茎、叶，并且产量比菊花大的多，这些茎、叶往往被视作副产品丢弃，而菊叶具有清肝明目、解毒消肿等功效，可用于头风、目眩、疔疮、痈肿等证[2],具有一定的药用价值。杭菊叶中尚含有大量有机酸、黄酮等成分，其中绿原酸类成分含量较高，包括单咖啡酰基奎宁酸：绿原酸（3-O-咖啡酰基奎宁酸）、新绿原酸（5-O-咖啡酰基奎宁酸）、隐绿原酸（4-O-咖啡酰基奎宁酸），二咖啡酰基奎宁酸：异绿原酸A（3,5-O-二咖啡酰基奎宁酸）、异绿原酸B（3,4-O-二咖啡酰基奎宁酸）、异绿原酸C（4,5-O-二咖啡酰基奎宁酸），具有抗诱变、抗菌、抗病毒、清除自由基、抗氧化、降血压血脂等多种生物活性[3,4].

　　杭菊为浙江道地药材，主产于桐乡等地，杭菊叶资源丰富，为了合理开发和综合利用杭菊叶，本文建立了HPLC同时测定菊叶中新绿原酸、绿原酸、隐绿原酸、异绿原酸A、异绿原酸B、木犀草苷的方法；分析了杭菊叶不同生长过程中绿原酸类成分与木犀草苷的变化趋势；并比较了同期采收的杭菊叶与杭菊花中绿原酸类成分与木犀草苷的含量差异，以期为确定杭菊叶的采收时间、质量控制、资源综合利用提供科学依据。

　　1 材料

　　1.1 仪器

　　Thermo U3000型高效液相色谱仪，1/10万电子天平（Sartorius R200D）；B3200S-T超声机（必能信超声有限公司）；Simplicity 纯水仪（ 美国密理博公司） .

　　1.2 试药

　　新绿原酸（15012821）、绿原酸（14111207）、隐绿原酸（15020603）、异绿原酸A（13041309）、异绿原酸B（15042210）、木犀草苷（13100904）购自成都普瑞法科技开发有限公司，其纯度均≥98%.

　　甲醇（色谱纯140405）购于天津四友，水为超纯水（自制），甲醇、磷酸均为分析纯。

　　杭菊叶及杭菊花样品采自金华职业技术学院百草园，经金华职业技术学院医学院罗国海副教授鉴定为菊科植物Chrysanthemum morifoliumRamat.的干燥头状花序和叶。采收后的杭菊叶采用自然干燥方法干燥，杭菊花采用蒸晒方式进行干燥。

　　2方法与结果

　　2.1 色谱条件

　　色谱柱为Thermo Syncronis C18柱（4.6 mm×250 mm,5 μm）；流动相： A相为甲醇，B相为体积分数0. 1%磷酸水，梯度洗脱程序详见表1.流速为1 ml·min-1;波长为325 nm;柱温为30 ℃；进样量为5 μL.

　　2.2 溶液制备

　　2.2.1 对照品溶液的配制

　　分别取新绿原酸、绿原酸、隐绿原酸、异绿原酸A、异绿原酸B、木犀草苷对照品适量，精密称定，置棕色量瓶中，加70%甲醇制成每1 mL含新绿原酸0.102 mg、绿原酸0.166 mg、隐绿原酸0.010 mg、异绿原酸A 0.063 mg、异绿原酸B 0.0405 mg、木犀草苷0.0632 mg的溶液，即得。

　　2.2.2 供试品溶液的制备

　　取杭菊叶及杭菊花（于2013年11月21号采摘，下同）干燥粉末（过40目筛）各0.20 g,精密称定，置具塞锥形瓶中，精密加入体积分数为70%的甲醇20 mL,称定重量，超声处理30 min（300 W,45 Hz），放冷，再称定重量，用70%甲醇补足减失的重量，摇匀，滤过，即得。

　　对照品和供试品的色谱图见图1,2和图3.

　　2.3 方法学考察

　　2.3.1 线性关系考察

　　精密吸取各对照品溶液 1,3,5,7,10 μL注入高效液相色谱仪，按上述色谱条件测定峰面积，以各对照品进样质量为横坐标（X），峰面积为纵坐标（Y），绘制标准曲线，计算回归方程、相关系数和线性范围，结果见表2.

　　2.3.2 精密度试验

　　精密吸取杭菊叶样品（20131121）供试品溶液5 μL,按上述色谱条件，连续进样5次，分别测定新绿原酸、绿原酸、隐绿原酸、异绿原酸B、异绿原酸A、木犀草苷的峰面积，结果6种成分峰面积的RSD分别为0.37%、0.40%、0.28%、0.74%、0.32%和0.54%,表明精密度良好。

　　2.3.3 重复性试验

　　取同一批次的杭菊叶样品（20131121）5份，按“2.2.2”项下供试品溶液的制备方法制备供试品溶液，分别精密吸取5 μL,注入色谱仪，按“2.1”项下色谱条件记录色谱图，测定6种成分的质量分数。结果新绿原酸、绿原酸、隐绿原酸、异绿原酸B、异绿原酸A、木犀草苷平均含量分别为0.70%、1.57%、0.15%、0.28%、3.10% 和0.50%,RSD分别为1.04%、0.83%、1.48%、1.66%、1.27% 和1.53%,表明试验方法重复性良好。

　　2.3.4 稳定性试验

　　分别在0,2,4,8,12,24 h精密吸取同一供试品（20131121）溶液5 μL,注入液相色谱仪，按“2.1”项下色谱条件，测定峰面积，结果新绿原酸、绿原酸、隐绿原酸、异绿原酸B、异绿原酸A、木犀草苷峰面积的RSD分别为0.75%、0.86%、0.43%、0.98%、0.77% 和0.41%,表明6种成分在24 h内稳定性良好。

　　2.3.5 加样回收率

　　取已知6种成分含量的样品粉末五份，分别精密加入一定量的对照品溶液，按“2.2.2”项下方法制备供试品溶液，测定6种成分的含量，计算回收率，结果新绿原酸、绿原酸、隐绿原酸、异绿原酸B、异绿原酸A、木犀草苷的回收率分别为，100.7%、99.1%、99.7%、101.2%、100.8%和99.8%,RSD分别为2.4%、1.6%、2.8%、2.0%、1.6%和1.8%.

　　2.4 杭菊叶生长过程中5种绿原酸成分及总绿原酸动态变化

　　按“2.2.2”项下供试品溶液的制备方法和色谱条件对所收集的不同生长时期的杭菊叶样品中的绿原酸类成分进行测定，计算含量，结果见表4、图4、图5.

　　对4月至11月杭菊叶整个生长过程中采收的杭菊叶样品中5种绿原酸类成分进行了测定，新绿原酸、绿原酸、隐绿原酸、异绿原酸B和异绿原酸A含量范围分别为0.41%~1.13%、1.33%~2.84%、0.04%~0.20%、0.12%~0.40%和2.75%~3.89%,平均含量为0.70%、1.80%、0.12%、0.24%和3.29%.5种绿原酸类成分含量由高到低依次为异绿原酸A、绿原酸、新绿原酸、异绿原酸B、隐绿原酸。

　　杭菊叶中的新绿原酸、隐绿原酸和异绿原酸B均呈现先升高后降低的趋势，且均以9月份采收为最高；而绿原酸和异绿原酸A则以4月份植物初长叶时含量最高，其后5月份剧烈下降，再平稳、缓慢上升，至11月份达到次高值。而绿原酸类总成分含量亦呈现初始较高、降低后升高、再降低的趋势，以4月份采收的杭菊叶中绿原酸类成分总含量最高，达7.48%;9月份次之，达6.65%.

　　2.5 杭菊叶生长过程中木犀草苷动态变化

　　按“2.2.2”项下供试品溶液的制备方法和色谱条件对所收集的不同生长时期的杭菊叶样品中的木犀草苷含量进行测定，结果见图6.

　　木犀草苷以4月份植物初长叶时含量较高，5月后含量下降，然后慢慢增加，至11月份含量最高。

　　2.6 同期采收的杭菊叶与花绿原酸类成分及木犀草苷的比较

　　按“2.2.2”项下供试品溶液的制备方法和色谱条件对11月同期采收的杭菊叶和杭菊花样品进行测定，计算含量，结果见表5、图7.

　　结果显示，在同期采收的杭菊叶与杭菊花绿原酸类成分中，隐绿原酸与异绿原酸B相近，而新绿原酸、绿原酸、异绿原酸A含量杭菊叶则比杭菊花高出约3~6倍。黄酮类成分中，杭菊叶的木犀草苷含量也较杭菊花高出3倍左右。

　　3 讨论

　　本实验对杭菊叶中5种绿原酸类成分及木犀草苷的测定方法进行了研究，实验所确定的方法可以一次性同时测定6种成分，且简便、准确，有效地揭示了不同生长时期杭菊叶中绿原酸类成分及黄酮类成分的动态变化，可用于杭菊叶的质量控制。

　　绿原酸类成分是咖啡酸与奎宁酸形成的脂类，其分子结构中含有酯键、不饱和双键、多元酚等不稳定部分，在提取过程中，易通过水解和分子内酯基的迁移而发生异构化[5-7],因此在提取时避免采用加热回流的方法[8],而采取了超声提取的方法，减少温度对其成分的影响。通过对不同溶剂的比较（甲醇、70%甲醇、50%甲醇、30%甲醇）、超声时间、溶剂体积等进行比较，确定供试品制备方法为0.20g样品加70%甲醇超声提取30min即可，操作简便。

　　绿原酸是植物体在有氧呼吸过程中经莽草酸途径产生的一种苯丙素类化合物，据文献报道，绿原酸类成分的抗氧化活性随着咖啡酰基的增加而增加[9] ,而当咖啡酰基的取代数减少时，其抗脂质过氧化和清除自由基的活性随之减少[10].本研究结果显示，杭菊叶中绿原酸类成分总含量除新叶生长期4月份外，以9月份采收最高，达6.65%,这可能与9月上、中旬是菊花现蕾期，菊花在这时进入生长盛期及生殖生长期，有氧呼吸增强有关。

　　杭菊花含有多种成分[11-12] ,其中黄酮、挥发油被认为是杭菊花的有效成分，杭菊花中的酚性成分被认为与其心血管作用密切相关[13].2015年版《中国药典》以绿原酸和木犀草苷作为菊花质量标准中含量测定的指标成分[1].杭菊花的采收旺季是每年的11月份，采收过后大量的杭菊叶将作为废弃品除去，而本文研究结果显示，同期采收的杭菊叶中绿原酸类总成分含量及木犀草苷含量高于杭菊花，这与陈伟等[14]的测定结果一致。且此时也是杭菊叶生长过程中木犀草苷含量最高的时节，绿原酸和异绿原酸A含量也较高，因此，每年11月份杭菊花采收完毕后，原本作为副产品被弃去茎、叶类资源完全可以作为提取木犀草苷及绿原酸类成分的原材料，使资源得以综合利用。

　　参考文献

　　[1] Ch.P（中国药典）Part 1 [S].2015:310.　　

　　[2] Editorial board of the second edition of Nanjing University Of Chinese Medicine. Great Dictionary of traditional Chinese Medicine（中药大辞典）[M] Second edition（2）。 Shanghai: Shanghai Scientific & Technical Publishers. 2006:2901.　　

　　[3] Gao JM,Zhang AL,Zhang KJ,et al. Advances in the Researches of Distribution, Extractionand Bioactivities of Chlorogenic Acids [J] . J Northwest Forestry Univ（西北林学院学报）， 1999, 14 （ 2） : 73-82.　　

　　[4] HANG An-ling, MA Qiong, GAO Jin-ming ,et al. Studies on bioactivities of chlorogenic acid and its analogues [J] . Chin Tradit Herb Drugs（中草药），2001,32（2）：173-176.　　

　　[5] Ma YH,Wang XQ,Hou FF,et al.Rapid resolution liquid chromatography （RRLC） analysis and studies on the stability of Shuang-Huang-Lian preparations[J].J Pharm Biomed Anal,2011,54（ 2） : 265-272.　　

　　[6] Makiko T,Kazuko N,Seiichiro I,et al. Changes in caffeic acid derivatives in sweet potato （ Ipomoea batatas L.） during cooking and processing[J].J Pharm Biomed Anal,2006,70（ 1） : 172-177.　　

　　[7] Gu Lihong, Zhu Pinye.Influence of Light and Temperature on the Stabilityof the Solution of Chlorogenic Acid[J].Chin Tradit Pat Med（中成药），1999,21（ 11） : 568-569.